В последние годы возрос интерес исследователей к растениям-паразитам в составе которых определены различные цитотоксины [1]. Наиболее изучены цитотоксины белковой природы активно подавляющие рост раковых клеток в культуре тканей, что во многом стимулирует исследователей к поиску новых источников их выделения [2,3].
Одним из малоизученных объектов являются лектиноподобные белки паразитирующих растений. Интерес к растениям паразитам рода Cuscuta объясняется тем, что они используются для лечения различных форм опухолей [4]. С другой стороны в последние годы появилось ряд сообщений по выделению и характеристики белков, а также активного химического начала из кускуты, названный авторами кускутные кислоты – А и Д, обнаружены противоопухолевые вещества гликозидподобной природы [1, 5, 6].
Ранее нами была изучена канцеролитическая активность различных видов повилики, произрастающих в Центральной Азии. Получены экстракты из трех видов: Cuscuta europea, Cuscuta lupuliformis, Cuscuta attenuate, паразитирующих соответственно на луговых травах, на побегах ивы и на фруктовых кустарниках. Установлено, что экстракты разных видов повилики оказались цитотоксичными в культуре тканей (от 40-80% подавления роста опухолевых клеток меланомы – рак кожи) [7]
Целью данной работы является изучение цитотоксической активности лектиноподобных гликопротеидов повилики.
В качестве растительного сырья использовали семена повилики (Cuscuta europea) произрастающие на луговых травах. Лектиноподобные белки (ЛПБ) были выделены из семян повилики путем экстракции солевым раствором с последующим ступенчатым высаливанием сульфатом аммония.
Для этого сухое сырье измельчали и переносили в фосфатно солевой буфер (ФСБ), содержащий 0,14 М NaCl, рН 7.7. Экстрагировали 2 ч на магнитной мешалке. Экстракт центрифугировали и собранные после центрифугирования супернатант (суммарные белки) подвергали ступенчатому высаливанию сульфатом аммония: одну часть осаждали сульфатом аммония до конечной концентрации 20% и вторую часть – до 50%. Центрифугировали и полученные супернатанты, обозначенные нами С20 и С50 и осадки – ЛПБ20 и ЛПБ50, диализовали против дистиллированной воды. Содержание белка определяли по методу Лоури [8]. Содержание углеводов определяли антрон-сернокислотным методом. [9]. Гемагглютинирующую активность ЛПБ определяли с использованием 2% суспензии крови человека или кролика в 96U – образных иммунологических планшетах [10].
Установлено, что наибольшую гемагглютинирующую активность проявляли фракции ЛПБ20 и ЛПБ50. Углеводную специфичность определяли, как описано в работе Поспелова [10]. Показано, что специфичность к глюкозе и маннозе проявила фракция ЛПБ50.
Ранее нами показано цитотоксическое действие белков ЛПБ20 и ЛПБ50 на клетках Hela и В-16 [11].
В данной работе изучена цитотоксическая активность на клетках U937 и Акат.
Клеточная культура Акат выведена нами из перевиваемой опухоли Акатон (рак тонкой кишки мыши) для изучения биологически активных веществ, в том числе и противоопухолевых. Нами изучена чувствительность данной клеточной линии к действию некоторых клинических противоопухолевых препаратов разных классов: алкилирующие вещества (циклофосфан); антиметаболиты (метотрексат); противоопухолевые антибиотики (доксорубицин); вещества растительного происхождения (винбластин); синтетические противоопухолевые препараты – цисплатин.
Цитотоксический эффект препаратов оценивали МТТ — тестом. Для определения цитотоксического действия перевиваемую культуру клеток Акат рассевали в 96-луночные планшеты в количестве 20-30 тыс. клеток/мл в 100 мкл среды RPMI 1640 с 10% сыворотки эмбриона теленка и культивировали при температуре 370С в СО2 – инкубаторе. Через сутки вводили вещества в концентрациях 100, 10 и 1 мкг/мл на 100мкл среды, культивировали клетки в течение 24 часов и далее вводили в клетки МТТ [3-(4,5-диметилтиазол-2-ил)-2,5-дифенил-2Н-тетразолиум бромид] для выявления живых клеток [12]. После часовой инкубации среду осторожно сливали, добавляли ДМСО и инкубировали 20 мин., затем измеряли оптическую плотность раствора при длине волны 620нм.
Результаты исследования действия клинических противоопухолевых препаратов на клеточную линию Акат представлены в таблице 1.
Таблица 1
Действие клинических противоопухолевых препаратов на клетки АКАТ
Дозы
Препараты |
Процент подавления роста клеток, дозы мкг/мл.
|
||
100 | 10 | 1 | |
Метотрексат | 58 | 45 | 11 |
Винбластин | 81 | 65 | 57 |
Доксорубицин | 72 | 58 | 38 |
Циклофосфан | 57 | 43 | 37 |
Цисплатин | 96 | 82 | 63 |
Как следует из данных таблицы 1 стабильная клеточная линия АКАТ достаточно чувствительна к действию клинических препаратов различного механизма действия и может служит тест-системой для прескрининга широкого круга биологически активных веществ.
Цитотоксичность лектиноподобных белкв оценивали биохимически с помощью MTT-метода, подсчета живых клеток и по высвобождению из клеток лактатдегидрогеназы [11,13]
Контролем служили клетки без воздействия веществ. Уровень активности ЛДГ в контрольных клетках брали 100%. Цисплатин взят нами в качестве положительного контроля, указывающего на чувствительность клеток к воздействию препаратов.
Данные, полученные на клетках U937 представлены в таблице 2
Таблица 2
Действие гликопротеидов Cuscuta europea на культуру клеток U937
Доза,
мкг/мкл
Образцы |
Подавление включения
МТТ в клетки, % |
Подавление роста
клеток, % |
Активность ЛДГ, % | ||||||
100 | 10 | 1 | 100 | 10 | 1 | 100 | 10 | 1 | |
∑ фракция | 100,0 | 31,0 | 17,0 | 98,0 | 35,0 | 17,0 | 24,0 | 6,0 | 4,0 |
С20 | 48,0 | 49,0 | 51,0 | 50,0 | 43,0 | 51,0 | 19,0 | 5,0 | 3,8 |
С50 | 49,0 | 51,0 | 42,0 | 52,0 | 49,0 | 40,0 | 14,5 | 6,5 | 3,0 |
ЛПБ20 | 86,0 | 64 | 61 | 80,0 | 60,0 | 59,0 | 24,5 | 7,8 | 4,6 |
ЛПБ50 | 93 | 76 | 53 | 95,0 | 70,0 | 46,0 | 23,0 | 7,5 | 4,2, |
Цисплатин | 100,0 | 96,0 | 45,0 | 97 | 88 | 34 | 25,0 | 23,4 | 3,9 |
Как видно из таблицы 2 наибольшую цитотоксическую активность проявляют суммарная фракция и фракции ЛПБ20 и ЛПБ50 — 100%, 86% и 93% при дозе белка 100 мкг/мл. Аналогичные результаты получены при подсчете клеток трипановым синим и по определению уровня активности ЛДГ.
Нами также изучена цитотоксическая активность на культуре клеток Акат (Таблица 3).
Таблица 3
Действие гликопротеидов Cuscuta europea на культуру клеток Акат.
Доза,
мкг/мкл
Образцы, |
Подавление включения
МТТ в клетки, % |
Подавление роста
клеток, % |
Активность ЛДГ, % | ||||||
100 | 10 | 1 | 100 | 10 | 1 | 100 | 10 | 1 | |
∑ фракция | 86,0 | 33,0 | 10,0 | 80,0 | 34,0 | 11,0 | 30,0 | 8,0 | 3,0 |
С20 | 35,0 | 15,0 | 8,0 | 33,0 | 17,0 | 5,0 | 26,0 | 5,0 | 4,0 |
С50 | 40,0 | 12,0 | 10,0 | 46,0 | 12,0 | 8,0 | 23,0 | 5,0 | 3,0 |
ЛПБ20 | 89,0 | 58,0 | 43,0 | 90,0 | 55,0 | 41,0 | 28,0 | 9,0 | 5,0 |
ЛПБ50 | 96,0 | 60,0 | 40,0 | 95,0 | 58,0 | 37,0 | 27,0 | 7,0 | 5,0 |
Цисплатин | 98,0 | 85,0 | 35,0 | 97 | 59 | 34 | 26,0 | 22,0 | 5,0 |
Как видно из таблицы 3 фракции белков Cuscuta europea оказывает различное воздействие. Так, цитотоксическое действие на клетки оказывает суммарная фракция белка и фракции, полученные осаждением сульфатом аммония 20% и 50% — 100%, 89% и 96% при дозе белка 100 мкг/мл, соответственно. А также 60% цитотоксичность проявили фракция ЛПБ50 при дозе белка 10 мкг/мл. Аналогичные результаты подавления роста клеток получены при подсчете клеток трипановым синим и по определению уровня активности ЛДГ.
Таким образом, нами выделены и охарактеризованы лектиноподобные белки из повилики (Cuscuta europea). Изучено цитотоксическая активность и установлено, что наибольшую цитотоксическую активность проявляют суммарная фракция лектиноподобных белков и фракции ЛПБ20 и ЛПБ50 по трем тестам, а именно по включению МТТ в клетки, по подсчету живых клеток и по уровню активности ЛДГ.
Список литературы
- Du X-Mkohinata K., Kawasaki T., Guo Y-T., Miyahara K., Phytochemistry, 1998, v. 48, p. 843-850
- . Lord J.M. The use of cytotoxic plant lectins in cancer therapy. // Plant Physiol. 1987. V. 85. P. 1 -3.
- Dwek B.A., Glycobiology: toward understanding the function of sugars // Chem. Rev. 1996. V. 96. P. 683-720
- Федюшин М.П. Некоторые материалы к истории русской онкологии // Вопр. онкол., 1953, XXVI, 6, P. 278-287).
- Аnis E. et. al.Sterols and Sterol Glycosides from Cuscuta reflexa // Natural Product Sciences, 1999, N. 5 P. 124-126
- Zhelev ZH. D et. , Isolation , partial characterization and complement inhibiting activity of a new glycoprotein from cuscuta euroea // BBRC, 1994, V. 202, P. 186-194
- Мавлонов Г.Т., Убайдуллаева Х.А. и др., Исследование антираковых компонентов повилики Cuscuta I. // Труды международной конф., 2004, Алматы, стр.201-203.
- Lowry O., Rosenbroung R., Parr A., Randall R.I. Protein measuremen with the folin phenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. V. 193. P.265-269
- Хашимова З.С., Мангутова Ю.С., Леонтьев В.Б. Структурно — функциональное изучение гликопротеидов хлопчатника // Химия природ. соедин. 1999. №. 3. С.376-384.
- Поспелов С.В. Лектины представителей рода эхинацея (Echinacea mjench.). Методические аспекты оценки активности. // Химия растительного сырья 2012, № 3 С. 143-148
- Кахарова К.А.,Хашимова З.С., Сагдиев Н.Ж. Гликопротеиды паразитирующих растений (Cuscuta Europea) // Труды межд. симпозиума Фундаментальные и прикладные проблемы науки,2014, т. 3, С. 122-128
- Berridge MV, Herst PM , and Tan AS. Tetrazolium dyes as tools in cell biology: new insights into their cellular reduction. Biotechnology Annual Review, 11: 127-152 (2005).
- Бочкарев А.В., Зимин Ю.В., Хомутов А.Е. Изменение активности лактатдегидрогеназы печени крыс при действии гепарина в условиях in vitro // Вестник Нижегородского университета им. Н.И. Лобачевского, 2006, № 5, с. 86-88[schema type=»book» name=»ЛЕКТИНОПОДОБНЫЕ БЕЛКИ ПОВИЛИКИ: ХАРАКТЕРИСТИКА И БИОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ.» description=»Целью данной работы является изучение цитотоксической активности лектиноподобных гликопротеидов повилики. Лектиноподобные белки (ЛПБ) были выделены из семян повилики путем экстракции солевым раствором с последующим ступенчатым высаливанием 20% и 50% сульфатом аммония и обозначены ЛПБ20 и ЛПБ50. Установлено, что наибольшую гемагглютинирующую активность проявляли фракции ЛПБ20 и ЛПБ50. В полученных нами фракциях изучена углеводная специфичность и показано, что специфичность к глюкозе и маннозе проявляет фракция ЛПБ50. Цитотоксичность ЛПБ оценивали биохимически на перевиваемых клеточных культурах U937 и Акат (выведеная нами новая стабильная клеточная линия из перевиваемой опухоли Акатон -рак тонкой кишки мыши),с помощью MTT-метода, подсчета живых клеток и по высвобождению из клеток лактатдегидрогеназы. На клеточной культуре U937 наибольшую цитотоксическую активность проявили суммарная фракция и фракции ЛПБ20 и ЛПБ50 — 100%, 86% и 93% при дозе белка 100 мкг/мл. На клетках Акат фракции ЛПБ20 и ЛПБ50 также проявили высокую цитотоксическую активность. Аналогичные результаты подавления роста клеток получены при подсчете клеток трипановым синим и по определению уровня активности ЛДГ. Таким образом, нами выделены и охарактеризованы лектиноподобные белки из повилики (Cuscuta europea). Изучено цитотоксическая активность лектиноподобных гликопротеидов повилики. Установлено, что наибольшую цитотоксическую активность проявляют суммарная фракция лектиноподобных белков и фракции ЛПБ20 и ЛПБ50 по трем тестам, а именно по включению МТТ в клетки, по подсчету живых клеток и по уровню активности ЛДГ.» author=»Кахарова Камола А Азаматовна, Хашимова Зайнат Саттаровна, Сагдиев Наиль Жадитович» publisher=»БАСАРАНОВИЧ ЕКАТЕРИНА» pubdate=»2016-12-23″ edition=»euroasian-science.ru_25-26.03.2016_3(24)» ebook=»yes» ]